胞冷凍保存方法:選擇凍存處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。1.按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。2.按照培養(yǎng)細(xì)胞密度和所用細(xì)胞凍存管的尺寸計(jì)算所需凍存細(xì)胞數(shù)。(參考:5×105至5×106cells/ml)。3.取相當(dāng)于所需細(xì)胞數(shù)的細(xì)胞懸浮液量,置于離心管中,離心收集培養(yǎng)細(xì)胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min)。移去離心管中的上清液。4.加入適量的無(wú)血清型細(xì)胞凍存液于離心管中,使細(xì)胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻,制成細(xì)胞混合液。5.將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。6.直接將含細(xì)胞混合液的凍存管放入-80℃冰箱,長(zhǎng)期冷凍保存。7.若研究者需要液氮保存時(shí),可將完全凍結(jié)的凍存管(放入-80℃冰箱后至少一晝夜)移至-196℃液氮罐。凍存要求發(fā)生改變,因?yàn)閮龃婕?xì)胞要進(jìn)行臨床應(yīng)用。杭州無(wú)血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商
無(wú)血清細(xì)胞凍存液:凍存注意:開蓋之前,用70%的乙醇或異丙醇擦拭瓶身。以下說(shuō)明適用于在6孔板內(nèi)的培養(yǎng)物的凍存。培養(yǎng)物應(yīng)該在適合傳代的時(shí)候進(jìn)行收集和凍存。每管所含有的細(xì)胞應(yīng)當(dāng)來(lái)源于6孔板的1個(gè)培養(yǎng)孔。如果使用其他的培養(yǎng)器皿,請(qǐng)相應(yīng)的調(diào)整體積。1.在室溫(15-25°C)以300xg離心5分鐘。2.輕輕吸走上清液,注意不要擾動(dòng)細(xì)胞團(tuán)。3.用血清學(xué)吸管以1mL的TBD-698重懸細(xì)胞。在打散細(xì)胞團(tuán)時(shí),盡量減少細(xì)胞聚集體分解。4.用2mL的血清學(xué)吸管將1mL的細(xì)胞聚集體轉(zhuǎn)移到標(biāo)記好的凍存管中。5.用以下方法凍存細(xì)胞聚集體:推薦使用緩速降溫方法,每分鐘降低1度,隨后可以在-196°C液氮長(zhǎng)期保存。不推薦在-80°C長(zhǎng)期保存。逐步降溫法:-20°C保存2個(gè)小時(shí),然后-80°C中保存2個(gè)小時(shí),隨后可以在-196°C液氮中長(zhǎng)期保存。濟(jì)南無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家供應(yīng)在冰袋附近操作時(shí),低溫避免保護(hù)劑對(duì)細(xì)胞造成損傷。
無(wú)血清凍存液注意事項(xiàng):1、請(qǐng)選擇對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞進(jìn)行凍存。2、凍存液加入細(xì)胞后,請(qǐng)盡快放入-80C冰箱凍存。3、本產(chǎn)品凍存細(xì)胞可以在-80°C冰箱保存3年以上。4、若需長(zhǎng)期凍存細(xì)胞,請(qǐng)轉(zhuǎn)移至液氮罐中貯存。5、凍存液中含DMSO成分,為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套。無(wú)血清凍存液特性:1.不含動(dòng)物成分。2.不需回溫,完全即用型。3.適合各種動(dòng)物細(xì)胞。4.適合無(wú)血清培養(yǎng)細(xì)胞與含血清培養(yǎng)細(xì)胞。5.復(fù)蘇細(xì)胞存活率高。無(wú)血清凍存液用途:1、無(wú)血清細(xì)胞凍存液用于免疫細(xì)胞及干細(xì)胞的存儲(chǔ)。2、細(xì)胞保藏中心,無(wú)血清細(xì)胞凍存液用于細(xì)胞株的長(zhǎng)期保存。3、科研高校,無(wú)血清細(xì)胞凍存液用于細(xì)胞株凍存。4、無(wú)血清細(xì)胞凍存液用于醫(yī)院樣本庫(kù)細(xì)胞樣本保存。無(wú)血清凍存液穩(wěn)定性及保存條件:1、置于2~8℃避光保存,有效期為1年;置于-20℃保存,有效期為3年;2、本產(chǎn)品請(qǐng)于保質(zhì)期內(nèi)使用,超過(guò)保質(zhì)期,必須放棄使用;3、為確保產(chǎn)品質(zhì)量,請(qǐng)避免反復(fù)凍融相關(guān)產(chǎn)品。
細(xì)胞凍存秘籍:程序1.凍存前檢查凍存前,細(xì)胞應(yīng)處于指數(shù)生長(zhǎng)期,確保細(xì)胞處于健康狀態(tài)。理想情況下,應(yīng)在收獲細(xì)胞前24小時(shí)更換培養(yǎng)基。建議對(duì)培養(yǎng)物進(jìn)行微生物污染物,特別是支原體的檢測(cè),并通過(guò)適當(dāng)?shù)姆椒?,如STR分析確定其身份。如果在培養(yǎng)過(guò)程中使用物品,那么建議在冷凍前1到2周不使用物品,這樣如果出現(xiàn)污染,可以更容易地發(fā)現(xiàn)。2.收集細(xì)胞通常,您可以使用常規(guī)細(xì)胞傳代的實(shí)驗(yàn)程序來(lái)收獲細(xì)胞。細(xì)胞收獲期間盡可能溫和操作。本程序推薦的試劑量是針對(duì)為75平方厘米(T-75)培養(yǎng)瓶;若使用其他培養(yǎng)容器,請(qǐng)相應(yīng)調(diào)整所用試劑量。A.使用無(wú)菌吸管,取出并丟棄培養(yǎng)基。請(qǐng)妥善處置與細(xì)胞接觸的任何材料和溶液。B.用5到10mlCMF-PBS沖洗細(xì)胞,去除所有痕量的血清。C.加入3到5ml的胰酶(在CMF-PBS中),37℃孵育。預(yù)熱酶溶液通常會(huì)縮短處理時(shí)間。無(wú)任何外源蛋白和血清,適用于各類動(dòng)物細(xì)胞株凍存。
永生化的細(xì)胞系往往相當(dāng)健壯,因此,使用實(shí)驗(yàn)室自制的凍存培養(yǎng)基,效果也不錯(cuò)。典型的配方是在生長(zhǎng)培養(yǎng)基中加入5%到10%的DMSO和5%到40%的血清,或只是在血清中加入10%的DMSO。DMSO的作用是取代細(xì)胞中的一些水,以防止冰晶形成,刺穿細(xì)胞。據(jù)賽默飛世爾科技的較深科學(xué)家RhondaNewman介紹,DMSO還能防止細(xì)胞在冷凍期間發(fā)生收縮,而后在解凍時(shí)又變得腫脹。血清,這種富含營(yíng)養(yǎng)成分的物質(zhì),直接支持細(xì)胞。“當(dāng)細(xì)胞處于這種營(yíng)養(yǎng)豐富的環(huán)境時(shí),它們能夠更好地復(fù)蘇。無(wú)血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品性能:細(xì)胞凍存是細(xì)胞實(shí)驗(yàn)中的一個(gè)常規(guī)技術(shù)。寧波正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液推薦廠家
同時(shí)另一些保護(hù)劑不能穿透細(xì)胞。杭州無(wú)血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商
細(xì)胞凍存注意事項(xiàng):1、細(xì)胞貼壁少的問題:教科書中說(shuō)明凍存細(xì)胞解凍時(shí)1ml細(xì)胞液要加10ml-15m培養(yǎng)液,而在我的試驗(yàn)中的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為培養(yǎng)基越少細(xì)胞越容易貼附。2、復(fù)蘇細(xì)胞分裝的問題:試驗(yàn)中我的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為復(fù)蘇1管細(xì)胞一般可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中,分裝過(guò)多,細(xì)胞濃度過(guò)低,不利于細(xì)胞的貼壁。3、加培養(yǎng)基的量放入問題:這個(gè)量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度,從如果你加培養(yǎng)基的太少,那么DMSO的濃度就會(huì)比較大,就會(huì)影響細(xì)胞生長(zhǎng),從以前的資料來(lái)看,DMSO的濃度在小于0.5%的時(shí)候?qū)σ话慵?xì)胞沒有什么影響,還有一個(gè)說(shuō)法是1%。所以如果你的凍存液的濃度是10%DMSO的話那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無(wú)害濃度杭州無(wú)血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商