尺寸排阻層析,也稱為凝膠過(guò)濾,是根據(jù)蛋白質(zhì)流體力學(xué)體積(或表觀分子量)進(jìn)行分離的獨(dú)特方法。其固定相是由高度多孔的惰性顆粒組成。當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)混合物通過(guò)層析柱時(shí),大于孔徑的蛋白質(zhì)無(wú)法進(jìn)入顆粒內(nèi)部,只能從顆粒間的空隙流過(guò),因而較早被洗脫。較小的蛋白質(zhì)可以進(jìn)入部分或全部孔徑,在柱內(nèi)停留的路徑更長(zhǎng),因而被較晚洗脫。SEC的流動(dòng)相只用于輸送蛋白質(zhì),不參與分離過(guò)程,因此通常采用等ocratic洗脫(恒定緩沖液成分)。SEC主要用于三個(gè)目的:1)脫鹽或更換緩沖液;2)估算蛋白質(zhì)的表觀分子量;3)作為精純步驟,分離蛋白質(zhì)的單體與聚合體,或分析蛋白質(zhì)的寡聚狀態(tài)。其優(yōu)點(diǎn)是條件溫和,能保持蛋白質(zhì)活性,但分辨率相對(duì)較低,且上樣量小。蛋白分離純化技術(shù)通常結(jié)合多種分離方法聯(lián)用。河南酶蛋白分離純化

混合模式層析的固定相配體設(shè)計(jì)為能夠同時(shí)通過(guò)兩種或多種不同的相互作用機(jī)制與蛋白質(zhì)結(jié)合,例如靜電相互作用與疏水相互作用的結(jié)合,或氫鍵與π-π相互作用的結(jié)合。這種多重作用機(jī)制使得其選擇性不同于傳統(tǒng)的IEX或HIC,往往能分離用傳統(tǒng)方法難以分開(kāi)的蛋白質(zhì)。它可以在高鹽條件下結(jié)合帶電荷的蛋白質(zhì),這打破了傳統(tǒng)IEX的局限。羥基磷灰石層析是經(jīng)典的混合模式層析,其同時(shí)存在Ca2?位點(diǎn)(與蛋白質(zhì)的羧基作用,類似陽(yáng)離子交換)和PO?3?位點(diǎn)(與蛋白質(zhì)的氨基作用,并有氫鍵和金屬螯合作用)?;旌夏J綄游鰹榧兓に囬_(kāi)發(fā)提供了新的有力工具。武漢膜蛋白分離純化操作細(xì)節(jié)穩(wěn)定的實(shí)驗(yàn)設(shè)備是確保蛋白分離純化順利進(jìn)行的必要條件。

層析技術(shù)是現(xiàn)代蛋白質(zhì)純化的支柱,其主要原理是利用蛋白質(zhì)在固定相(層析介質(zhì))和流動(dòng)相(緩沖液)之間分配的差異,因理化性質(zhì)不同而產(chǎn)生遷移速率差,從而實(shí)現(xiàn)分離。固定相被填充在層析柱中,當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)混合物隨流動(dòng)相流經(jīng)時(shí),與固定相相互作用力弱的蛋白質(zhì)先被洗脫,而作用力強(qiáng)的則保留時(shí)間更長(zhǎng)。根據(jù)相互作用的性質(zhì),衍生出離子交換、疏水、親和、凝膠過(guò)濾等多種層析模式,它們共同構(gòu)成了一個(gè)多維度的純化工具箱。親和層析通常作為純化流程的第一步,旨在從粗提液中快速、特異性地“捕獲”目標(biāo)蛋白。其原理是利用目標(biāo)蛋白與固定相上配體之間高親和性的、可逆的生物特異性相互作用。較經(jīng)典的例子是固定化金屬離子親和層析用于純化帶組氨酸標(biāo)簽的重組蛋白,以及Protein A/G親和層析用于純化抗體。該方法能在一步之內(nèi)實(shí)現(xiàn)數(shù)千倍的純化,極大地提高了純度,并有效濃縮了目標(biāo)蛋白,是高效純化流程的基石。
FPLC和HPLC都是采用泵系統(tǒng)來(lái)精確控制流動(dòng)相輸送的層析技術(shù),區(qū)別于依靠重力流動(dòng)的傳統(tǒng)柱層析。FPLC系統(tǒng)專為生物大分子(如蛋白質(zhì)、核酸)設(shè)計(jì),使用生物相容性的材料(如PEEK)流路,以中低壓(通常<5 MPa)運(yùn)行,采用溫和的瓊脂糖或聚合物基質(zhì)樹(shù)脂,旨在保持蛋白質(zhì)的活性。它非常適合用于IEX, SEC, HIC和親和層析的精確分析和制備。HPLC則通常在更高的壓力下運(yùn)行(10-40 MPa),使用剛性更強(qiáng)的硅膠基質(zhì)小顆粒填料,提供極高的分辨率。反相層析(RPC)和離子交換層析(IEX)的HPLC形式常用于分析和小量制備,但HPLC的激烈條件可能使某些蛋白質(zhì)變性。選擇FPLC還是HPLC取決于對(duì)分辨率、速度和蛋白質(zhì)活性保持的綜合需求。高壓均質(zhì)技術(shù)可用于蛋白質(zhì)的細(xì)胞破碎提取環(huán)節(jié)。

羥基磷灰石是一種磷酸鈣陶瓷,其層析機(jī)制兼具離子交換(與Ca2?位點(diǎn)作用)和金屬親和(與PO?3?位點(diǎn)作用)的特性。它對(duì)DNA有強(qiáng)烈的結(jié)合能力,并能根據(jù)蛋白質(zhì)的表面電荷分布進(jìn)行獨(dú)特模式的分離。在抗體純化中,HAC常被用于有效去除聚集體和殘留的宿主DNA與Protein A,是一種重要的精純手段。某些三嗪類染料,如Cibacron Blue F3G-A,其結(jié)構(gòu)與NAD?等輔酶相似,因此能特異性結(jié)合許多需要核苷酸輔酶的酶(如脫氫酶、激酶)。將這類染料固定化到介質(zhì)上制成的染料親和層析,提供了成本遠(yuǎn)低于傳統(tǒng)生物配體的親和純化方案,雖然特異性可能稍遜,但在許多應(yīng)用中已足夠有效。蛋白分離純化中的每一步都需要精確的實(shí)驗(yàn)控制。武漢膜蛋白分離純化操作細(xì)節(jié)
先進(jìn)的蛋白分離純化技術(shù)提高了蛋白質(zhì)研究的效率。河南酶蛋白分離純化
純化得到的蛋白質(zhì),其結(jié)構(gòu)完整不等于功能完整?;钚詼y(cè)定是檢驗(yàn)純化過(guò)程是否成功維持蛋白質(zhì)生物功能的金標(biāo)準(zhǔn)。對(duì)于酶,通過(guò)測(cè)定其催化底物轉(zhuǎn)化為產(chǎn)物的速率來(lái)評(píng)估酶活;對(duì)于抗體,可通過(guò)ELISA或細(xì)胞結(jié)合實(shí)驗(yàn)評(píng)估其親和力與特異性。將活性單位與總蛋白量相比,得到比活力,比活力的提升是衡量純化步驟有效性的較直接指標(biāo)。重組蛋白表達(dá)中引入的親和標(biāo)簽極大方便了純化,但殘留的標(biāo)簽可能干擾蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)、功能或用于療愈。因此,在純化后期常需去除標(biāo)簽。這通過(guò)在標(biāo)簽與目的蛋白之間設(shè)計(jì)一個(gè)蛋白酶特異性切割位點(diǎn)來(lái)實(shí)現(xiàn),常用酶有凝血酶、腸激酶、TEV蛋白酶等。切割后,通常需要再次使用親和層析將已切除標(biāo)簽的目標(biāo)蛋白與標(biāo)簽、蛋白酶及未切割的蛋白分離開(kāi)來(lái)。河南酶蛋白分離純化
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