江蘇化學(xué)制藥熱原檢測合規(guī)申報(bào)

MAT 法熱原檢測背景值偏高會干擾結(jié)果判讀，需從試劑、操作兩方面解決。試劑相關(guān)問題中，非特異性活化（如試劑含微量熱原）會導(dǎo)致細(xì)胞異常分泌 IL-6，需選用低內(nèi)毒素的試劑與耗材；檢測試劑添加過多（如抗體濃度過高）會增加非特異性結(jié)合，需按說明書稀釋試劑或降低推薦濃度。操作環(huán)節(jié)問題更多見：孔洗滌不充分會殘留未結(jié)合抗體與酶，需按方案完成規(guī)定洗滌次數(shù)（如 3-5 次），確保洗滌液充分浸潤孔底；洗滌緩沖液污染（如滋生微生物）會引入外源信號，需現(xiàn)配現(xiàn)用緩沖液；加終止液后讀板延遲（超 10 分鐘），會因黃色產(chǎn)物降解導(dǎo)致背景虛高，需加終止液后立即讀板；底物孵育時(shí)見光會引發(fā)非特異性顯色，需在避光環(huán)境下進(jìn)行 TMB 孵育；孔板底部臟（如殘留指紋、液體痕跡）會影響光吸收，需用無塵紙清潔孔板底部后再讀板。通過以上措施，可有效降低背景值，確保檢測信號的真實(shí)性，避免因背景干擾導(dǎo)致熱原濃度誤判。

熱原是能引發(fā)恒溫動物體溫異常升高的物質(zhì)總稱，主要成分為細(xì)菌內(nèi)毒素（革蘭氏陰性菌脂多糖 LPS），同時(shí)涵蓋病毒、真菌毒素、支原體等非內(nèi)毒素?zé)嵩?，其檢測是保障藥品與醫(yī)療器械安全性的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。當(dāng)前熱原檢測已形成 “特異性檢測 + 廣譜篩查” 互補(bǔ)的完整體系：以鱟試驗(yàn)法（含天然 LAL 與重組 rCR/rFC 試劑）作為細(xì)菌內(nèi)毒素的特異性檢測手段，憑借 fg 級靈敏度成為制藥行業(yè)常規(guī)質(zhì)控方法，可通過凝膠法實(shí)現(xiàn)定性、動態(tài)濁度 / 顯色法完成定量；以家兔熱原試驗(yàn)作為傳統(tǒng)廣譜篩查方法，雖操作繁瑣（需預(yù)試篩選基礎(chǔ)體溫穩(wěn)定家兔，正式試驗(yàn)觀察 3 小時(shí)體溫變化），但仍是放射性質(zhì)的藥物、血液制品等高風(fēng)險(xiǎn)產(chǎn)品排除非內(nèi)毒素?zé)嵩难a(bǔ)充手段；以單核細(xì)胞活化反應(yīng)測定（MAT）作為新興全熱原檢測技術(shù)，利用人源單核細(xì)胞（如 THP-1 細(xì)胞）釋放 IL-6、TNF-α 等細(xì)胞因子的特性，可同時(shí)識別內(nèi)毒素與非內(nèi)毒素?zé)嵩鹾弦呙?、基因治療產(chǎn)品等對風(fēng)險(xiǎn)控制的需求。三種方法協(xié)同應(yīng)用，從原料入廠到成品放行構(gòu)建全流程熱原防控網(wǎng)絡(luò)，既保證對內(nèi)毒素的準(zhǔn)確監(jiān)控，又避免非內(nèi)毒素?zé)嵩倪z漏風(fēng)險(xiǎn)。

MAT法熱原檢測特定標(biāo)準(zhǔn)品與傳統(tǒng)細(xì)菌內(nèi)毒素國家標(biāo)準(zhǔn)品存在本質(zhì)差異，需明確區(qū)分以保障檢測準(zhǔn)確性。MAT 特定標(biāo)準(zhǔn)品為大腸桿菌（E.coli 0113:H10:K）菌株制備，經(jīng)全國 5 家藥品檢驗(yàn)所（含中檢院）用凝膠法、動態(tài)濁度法及動態(tài)顯色法協(xié)作標(biāo)定，溯源至國際標(biāo)準(zhǔn)品，可同時(shí)檢測內(nèi)毒素與非內(nèi)毒素?zé)嵩?；而傳統(tǒng)細(xì)菌內(nèi)毒素國家標(biāo)準(zhǔn)品（如 9000EU 規(guī)格）源自大腸桿菌（E.coli O111:B4），只適用于內(nèi)毒素檢測，無法識別非內(nèi)毒素?zé)嵩ｊP(guān)鍵驗(yàn)證數(shù)據(jù)顯示，用 MAT法檢測 9000EU 內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品時(shí)，加標(biāo)回收率不在 50%-200% 的合格范圍，因此不能替代 MAT 特定標(biāo)準(zhǔn)品。值得注意的是，盡管 MAT 試劑盒用內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)曲，但經(jīng)驗(yàn)證其可識別非內(nèi)毒素?zé)嵩魳悠分写嬖诜莾?nèi)毒素?zé)嵩ㄈ绺锾m氏陽性菌的脂磷壁酸），會觸發(fā)細(xì)胞陽性反應(yīng)，有效避免漏檢，這也是 MAT 法在熱原防控中優(yōu)于單一內(nèi)毒素檢測的關(guān)鍵優(yōu)勢。

含消除炎癥成分的樣品可能抑制 IL-6 產(chǎn)生，需通過科學(xué)評估排除干擾，確保 MAT 法熱原檢測結(jié)果準(zhǔn)確。根據(jù)藥典要求，若樣品能抑制單核細(xì)胞促炎癥因子釋放，需通過以下步驟驗(yàn)證適用性：首先，選擇樣品 A、2A、4A 倍稀釋（均不超過上限有效稀釋倍數(shù) MVD），避免高濃度消除炎癥成分過度抑制；其次，進(jìn)行供試品加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)，若回收率在 50%-200% 的合格范圍，說明消除炎癥成分未影響熱原檢測；再對比 “供試品配制的標(biāo)曲” 與 “稀釋液配制的標(biāo)曲”，若兩者 IL-6 檢測值相差在 ±20% 以內(nèi)，表明樣品基質(zhì)對檢測無系統(tǒng)性干擾。例如，某消除炎癥單抗樣品經(jīng) 2 倍稀釋后，加標(biāo)回收率達(dá) 120%，兩種標(biāo)曲 IL-6 值相差 15%，判定可適用 MAT 法。若出現(xiàn)回收率偏低（<50%），可嘗試增加稀釋倍數(shù)（如 8A 倍）或采用熱滅活（若樣品耐熱）去除消除炎癥活性；若仍無法排除干擾，需結(jié)合家兔法進(jìn)行對比驗(yàn)證，避免因消除炎癥成分導(dǎo)致假陰性。

熱原檢測技術(shù)自 20 世紀(jì)初問世以來，經(jīng)歷了 “動物試驗(yàn)→體外生化檢測→細(xì)胞生物學(xué)檢測” 的三次關(guān)鍵變革，每一次變革均推動檢測效率、準(zhǔn)確性與全面性的提升。20 世紀(jì)初至中期，熱原檢測方法只有家兔熱原試驗(yàn)，通過觀察家兔體溫變化篩查熱原，雖實(shí)現(xiàn)了廣譜檢測，但存在動物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限，難以滿足制藥行業(yè)快速發(fā)展需求。20 世紀(jì) 60 年代，鱟試驗(yàn)法（LAL 法）的發(fā)明開啟了熱原檢測的 “體外生化時(shí)代”，利用鱟血變形細(xì)胞裂解物的凝血級聯(lián)反應(yīng)檢測細(xì)菌內(nèi)毒素，靈敏度提升至 ng 級，檢測時(shí)間縮短至 1-2 小時(shí)，迅速成為制藥行業(yè)常規(guī)質(zhì)控方法；但該方法依賴鱟資源，易受 β- 葡聚糖干擾，且只能檢測內(nèi)毒素，無法覆蓋非內(nèi)毒素?zé)嵩?1 世紀(jì)以來，重組技術(shù)與細(xì)胞生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展推動熱原檢測進(jìn)入 “全熱原管控時(shí)代”：重組級聯(lián)試劑（rCR）與重組 C 因子試劑（rFC）通過基因工程技術(shù)制備，擺脫對鱟資源的依賴，消除葡聚糖干擾，實(shí)現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn)；單核細(xì)胞活化反應(yīng)測定（MAT）利用人源單核細(xì)胞檢測全類型熱原，填補(bǔ)非內(nèi)毒素?zé)嵩瓩z測空白，且結(jié)果更貼近人體實(shí)際反應(yīng)。

MAT法熱原檢測出現(xiàn) “無信號”，需從試劑、實(shí)驗(yàn)操作、儀器三方面定位原因并解決。試劑層面，抗體不足或失活會導(dǎo)致無法捕獲 IL-6，需核對抗體稀釋比例，檢查保存條件（如 2-8℃）與有效期，必要時(shí)更換試劑；底物失效（如變色、沉淀）會無法顯色，需觀察底物外觀，失效則更換；混合不同試劑盒試劑會因成分不匹配導(dǎo)致反應(yīng)失敗，需使用同試劑盒試劑；ELISA 試劑盒保存不當(dāng)（如反復(fù)凍融）會破壞試劑活性，需按說明書分條件保存（如抗體 2-8℃、底物避光）。實(shí)驗(yàn)操作中，孵育溫度過低（<37℃）會抑制酶促反應(yīng)，需提前將試劑與孔板平衡至室溫，確保孵育溫度達(dá)標(biāo)；洗板機(jī)壓力過高或手動洗滌過猛，會洗去結(jié)合的抗體與酶，需調(diào)整洗板機(jī)壓力或輕柔手動洗滌；孵育時(shí)孔板未密封導(dǎo)致孔變干，會使反應(yīng)體系破壞，需用封口膜密封孔板。儀器方面，洗板機(jī)噴頭堵塞會導(dǎo)致洗滌不均或未洗，需清理噴頭；酶標(biāo)儀波長設(shè)置錯誤（未選 450nm）會無法檢測信號，需確認(rèn)波長設(shè)置正確。