血液制品熱原檢測流程

MAT 法熱原檢測標(biāo)曲采用非倍比稀釋，而非 1-0.5-0.25 的倍比稀釋，主要優(yōu)勢在于提升標(biāo)曲準(zhǔn)確性與適用性，避免稀釋誤差影響。一是可密集覆蓋關(guān)鍵濃度區(qū)間：熱原檢測的重點關(guān)注區(qū)為低濃度拐點（如 0.0125-0.1EU/mL）與高濃度平臺區(qū)（如 0.5-1EU/mL），非倍比稀釋可在這些區(qū)間設(shè)置更多濃度點（如 0.0125、0.025、0.05、0.1、0.25、0.5、1EU/mL），提升曲線擬合精度，而倍比稀釋低濃度點少，易導(dǎo)致低濃度熱原定量不準(zhǔn)。二是降低稀釋誤差累積：倍比稀釋需連續(xù)稀釋（如 1EU/mL→0.5EU/mL→0.25EU/mL），每一步誤差會累積，導(dǎo)致低濃度點實際濃度偏離理論值；非倍比稀釋通過單獨配制每個濃度點（如直接用標(biāo)準(zhǔn)品配制 0.025EU/mL），避免誤差累積，提升標(biāo)曲可靠性。三是適配不同樣品濃度：非倍比稀釋可根據(jù)樣品預(yù)期濃度調(diào)整標(biāo)曲范圍，如樣品預(yù)期濃度 0.05EU/mL，可增加 0.025、0.05、0.1EU/mL 點，確保樣品濃度落在標(biāo)曲線性區(qū)，而倍比稀釋范圍固定，靈活性差。這些優(yōu)勢使非倍比稀釋成為 MAT 法標(biāo)曲配制的優(yōu)先選擇方式。

熱原檢測技術(shù)自 20 世紀(jì)初問世以來，經(jīng)歷了 “動物試驗→體外生化檢測→細(xì)胞生物學(xué)檢測” 的三次關(guān)鍵變革，每一次變革均推動檢測效率、準(zhǔn)確性與全面性的提升。20 世紀(jì)初至中期，熱原檢測方法只有家兔熱原試驗，通過觀察家兔體溫變化篩查熱原，雖實現(xiàn)了廣譜檢測，但存在動物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限，難以滿足制藥行業(yè)快速發(fā)展需求。20 世紀(jì) 60 年代，鱟試驗法（LAL 法）的發(fā)明開啟了熱原檢測的 “體外生化時代”，利用鱟血變形細(xì)胞裂解物的凝血級聯(lián)反應(yīng)檢測細(xì)菌內(nèi)毒素，靈敏度提升至 ng 級，檢測時間縮短至 1-2 小時，迅速成為制藥行業(yè)常規(guī)質(zhì)控方法；但該方法依賴鱟資源，易受 β- 葡聚糖干擾，且只能檢測內(nèi)毒素，無法覆蓋非內(nèi)毒素?zé)嵩?1 世紀(jì)以來，重組技術(shù)與細(xì)胞生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展推動熱原檢測進(jìn)入 “全熱原管控時代”：重組級聯(lián)試劑（rCR）與重組 C 因子試劑（rFC）通過基因工程技術(shù)制備，擺脫對鱟資源的依賴，消除葡聚糖干擾，實現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn)；單核細(xì)胞活化反應(yīng)測定（MAT）利用人源單核細(xì)胞檢測全類型熱原，填補非內(nèi)毒素?zé)嵩瓩z測空白，且結(jié)果更貼近人體實際反應(yīng)。

MAT法熱原檢測中，ELISA 加終止液后的讀數(shù)時間需嚴(yán)格控制，以保障 IL-6 檢測信號穩(wěn)定。湖州申科生物MAT試劑盒說明書明確要求，終止液添加后需在 10 分鐘內(nèi)完成讀數(shù)，且需避光操作 —— 原因在于，終止液（如硫酸）會終止 TMB 顯色反應(yīng)，但生成的黃色產(chǎn)物在光照下易降解，超過 10 分鐘后 OD 值會下降，導(dǎo)致 IL-6 檢測值偏低。讀數(shù)前需進(jìn)行 30 秒震蕩混勻，確?？變?nèi)液體濃度均勻，避免因局部濃度差異導(dǎo)致復(fù)孔 OD 值波動。酶標(biāo)儀波長需設(shè)置為 450nm，若儀器含 600nm 參考波長，可同時檢測 600nm 波長以扣除背景干擾（如細(xì)胞碎片導(dǎo)致的光散射），提升檢測準(zhǔn)確性。需注意的是，讀數(shù)時不可覆蓋封板膜或蓋子，避免膜上凝結(jié)的水蒸氣滴入孔中，導(dǎo)致 OD 值異常升高。若因儀器故障無法及時讀數(shù)，需將微孔板密封后置于 4℃避光保存，并在 30 分鐘內(nèi)完成讀數(shù)，同時在記錄中注明延遲原因，評估延遲對結(jié)果的影響（如延遲 20 分鐘，OD 值可能下降 15%，需校正后使用）。

單核細(xì)胞活化反應(yīng)測定（MAT）是近年來熱原檢測領(lǐng)域的突破性技術(shù)，其原理基于人體免疫系統(tǒng)對熱原的天然應(yīng)答機制：人源單核細(xì)胞（如 THP-1 細(xì)胞系或新鮮人全血單核細(xì)胞）在熱原刺激下，會活化胞內(nèi)炎癥信號通路，釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細(xì)胞因子，通過 ELISA 檢測細(xì)胞因子的濃度，即可間接反映樣品中熱原的總量與活性。與傳統(tǒng)檢測方法相比，MAT 法具備三大不可替代的優(yōu)勢：一是廣譜性，可同時檢測細(xì)菌內(nèi)毒素、病毒、真菌毒素、支原體等所有類型熱原，填補了鱟試驗法只能檢測內(nèi)毒素的 “非內(nèi)毒素?zé)嵩^(qū)”，尤其適用于疫苗、基因治療產(chǎn)品等易受多種熱原污染的高風(fēng)險產(chǎn)品；二是人源相關(guān)性，采用與人體同源的細(xì)胞模型，檢測結(jié)果更貼近臨床實際熱原反應(yīng)，避免家兔試驗中動物種屬差異導(dǎo)致的誤判；三是高靈敏度，對細(xì)菌內(nèi)毒素的檢測限可達(dá) 0.0125EU/mL，對非內(nèi)毒素?zé)嵩ㄈ缃湍付嗵?、腺病毒）的檢測限低至 ng/pg 級，滿足低限值產(chǎn)品的質(zhì)控需求。

MAT法熱原檢測中，樣品與細(xì)胞共培養(yǎng)時長需嚴(yán)格控制，以保障炎癥因子分泌量穩(wěn)定。說明書要求共培養(yǎng) 24 小時，雖未明確允差，但實驗驗證顯示，±30 分鐘的允差對結(jié)果無明顯影響 —— 細(xì)胞因子（如 IL-6）分泌具有時間依賴性，24 小時左右達(dá)到分泌平臺期，半小時差異不會導(dǎo)致分泌量大幅波動。若實驗室對結(jié)果穩(wěn)定性要求極高（如 QC 放行檢測），建議嚴(yán)格按 24 小時操作，避免因時長差異引入誤差；若為預(yù)實驗（如樣品稀釋倍數(shù)摸索），±30 分鐘允差可接受，但需在記錄中注明實際培養(yǎng)時長。需注意的是，共培養(yǎng)時長不可超過 26 小時或短于 22 小時：過長會導(dǎo)致細(xì)胞活性下降（炎癥因子分泌減少），過短則未達(dá)分泌平臺期（檢測信號偏低），均可能導(dǎo)致熱原濃度低估。此外，培養(yǎng)環(huán)境需保持穩(wěn)定（37℃、5% CO?），溫度波動會影響細(xì)胞代謝，間接導(dǎo)致共培養(yǎng)時長的實際效果偏離，因此需定期校準(zhǔn)培養(yǎng)箱溫度，確保環(huán)境條件一致。

單核細(xì)胞系培養(yǎng)的高度可控性，為熱原檢測結(jié)果的可靠性提供關(guān)鍵保障。其培養(yǎng)基配方（如營養(yǎng)成分、血清濃度）可定制，確保細(xì)胞獲取充足營養(yǎng)；培養(yǎng)環(huán)境（37℃、5% CO?、濕度≥90%）可恒定控制，維持細(xì)胞好的活性與 TLR 受體表達(dá)水平，避免因環(huán)境波動導(dǎo)致細(xì)胞功能異常。這種可控性還能防止細(xì)胞遺傳突變與外源污染（如支原體、病毒），確保不同批次單核細(xì)胞系的熱原響應(yīng)一致性，讓熱原檢測結(jié)果批間差異小，符合 GMP 對檢測方法穩(wěn)定性的要求。