北京血液制品內(nèi)毒素檢測LER現(xiàn)象

來源： 發(fā)布時間：2025-10-07

檢測細菌內(nèi)毒素的堂試劑方法，是一個生物反應過程，受到很多因素的干擾。在一個供試品的檢測方法固定下來之前，為了得到準確的結(jié)果，必須要了解供試品與鱟試劑之間的相互關(guān)系。供試品中的成分往往非常復雜，而且會干擾試驗檢測系統(tǒng)的功能。很多干擾的機理，并不是非常清楚。但是業(yè)界比較能夠接受的理論是，如果供試品中某些因子影響了鱟試劑中蛋白的表達功能，則被認為是干擾作用（Inhibition/Enhancement，V/E）。干擾作用產(chǎn)生的因素較多，一般包括試劑因素（鱟試劑、內(nèi)毒素標準品）供試品因素（pH值、溫度、離子強度、濃度、水溶性、黏度、可發(fā)生鱟試劑反應的非內(nèi)毒素雜質(zhì)）和實驗因素（試驗器皿、細菌內(nèi)毒素檢查用水、鱟試劑抗干擾能力）等。
鱟試劑靈敏度復核至關(guān)重要，存放半年需重測，避免內(nèi)毒素檢測出現(xiàn)假陰性或假陽性。北京血液制品內(nèi)毒素檢測LER現(xiàn)象

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樣品中的脂質(zhì)體與表面活性劑，會通過不同機制干擾內(nèi)毒素檢測，需結(jié)合基質(zhì)特性選擇處理方式。脂質(zhì)體的干擾體現(xiàn)在兩方面：一是脂質(zhì)雙分子層會包裹內(nèi)毒素，使其無法與鱟試劑接觸，導致假陰性；二是脂質(zhì)體的膠體性質(zhì)會干擾凝膠形成（凝膠法）或光度信號讀?。岫?/ 顯色法）。針對完整脂質(zhì)體制劑，可先用生理鹽水稀釋降低脂質(zhì)體濃度，減少包裹作用；若需徹底釋放內(nèi)毒素，還可使用 DMSO、乙醇或甲醇等溶劑裂解脂質(zhì)體，暴露被包裹的內(nèi)毒素。表面活性劑的干擾則源于其對物質(zhì)結(jié)構(gòu)的改變：既可能破壞內(nèi)毒素的聚集體結(jié)構(gòu)，影響其活性；又可能導致鱟試劑中蛋白質(zhì)變性，抑制反應。對此，可通過內(nèi)毒素檢查用水或生理鹽水稀釋樣品，降低表面活性劑濃度，消除其對結(jié)構(gòu)的破壞作用。這些針對性處理能有效解決脂質(zhì)體與表面活性劑的干擾，確保內(nèi)毒素檢測結(jié)果真實可靠。
北京非動物源內(nèi)毒素檢測操作步驟湖州申科凝膠法鱟試劑符合藥典要求，配抗增液抑制非特異性反應，多靈敏度可選。

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內(nèi)毒素檢測的實驗方案需遵循“標曲可靠性驗證（靈敏度復核）-稀釋倍數(shù)計算-干擾試驗”的完整流程，以保障檢測結(jié)果準確合規(guī)。首先進行標曲可靠性試驗，用標準內(nèi)毒素制備至少3個濃度的稀釋液（相鄰濃度間稀釋倍數(shù)不超過10，下限濃度不低于鱟試劑標示檢測限），每濃度設 3 支平行管，同時做2支陰性對照；當陰性對照的吸光度小于或透光率大于標準曲線下限的檢測值或反應時間大于標準曲線下限的反應時間，對數(shù)據(jù)進行線性回歸，相關(guān)系數(shù)r的幅值≥0.980時試驗方有效，否則需重新操作。接著按公式 L=K/M 確定樣本內(nèi)毒素限值，K 值依給藥途徑而定，M結(jié)合人均60kg體重、1.62m2 體表面積及上限給藥劑量計算，也可參考藥典行標。隨后明確有效稀釋上限倍數(shù)（MVD），即供試品允許稀釋的上限倍數(shù)，確保在此范圍內(nèi)檢測限值。再開展樣本干擾試驗，制備供試品溶液（A）、供試品加標溶液（B，加標濃度為標曲中點）、標準曲線溶液（C）及陰性對照（D），按公式 R=(Cs-Ct)/λm×100%計算加標回收率，50%-200%為合格；若鱟試劑、生產(chǎn)工藝等發(fā)生變化，需重新進行干擾試驗，保障內(nèi)毒素檢測的可靠性。

低內(nèi)毒素回收（LER）又稱內(nèi)毒素掩蔽，是指無菌制劑（尤其蛋白類生物制劑）進行內(nèi)毒素檢測時，加標內(nèi)毒素的回收率＜50% 的現(xiàn)象，且無法通過稀釋排除，區(qū)別于傳統(tǒng)檢測干擾。LER 會導致內(nèi)毒素污染被低估，已被全球監(jiān)管機構(gòu)重點關(guān)注：FDA 2013 年要求生物藥 BLA 申報時提交 LER 研究報告；EMA 2023 年明確含表面活性劑（如吐溫）或螯合劑（如 EDTA）的制劑需提供 LER 數(shù)據(jù)；中國藥典 2025 版 9251 通則也新增 LER 內(nèi)容，與國際接軌。這些要求促使企業(yè)優(yōu)化內(nèi)毒素檢測流程，避免因 LER 導致的檢測偏差，確保藥品安全。
細菌內(nèi)毒素工作品若效價誤差或不穩(wěn)定，將影響實驗結(jié)果。

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樣品中存在的非特異性鱟反應啟動物，會繞過內(nèi)毒素直接觸發(fā)鱟試劑反應，導致內(nèi)毒素檢測出現(xiàn)假陽性，需針對性消除干擾。常見的非特異性啟動物包括 1,3-β-D 葡聚糖和含絲氨酸蛋白酶的生物制品（如胰酶）：1,3-β-D 葡聚糖會啟動鱟試劑的 G 因子旁路，不依賴內(nèi)毒素即可引發(fā)凝膠形成或光度變化；胰酶等絲氨酸蛋白酶類物質(zhì)，其作用機制與內(nèi)毒素觸發(fā)鱟試劑的過程相似，會模擬內(nèi)毒素信號導致誤判。針對這類干擾，若樣品含 1,3-β-D 葡聚糖，可使用試劑盒配套的抗增液，通過抑制 G 因子活性阻斷旁路啟動；若樣品為胰酶等生物制品，可通過加熱處理（如 80℃加熱 10 分鐘）滅活絲氨酸蛋白酶，避免其模擬內(nèi)毒素反應。這些處理措施能有效排除非特異性信號，確保內(nèi)毒素檢測只針對目標內(nèi)毒素產(chǎn)生響應，提升結(jié)果準確性。
細菌內(nèi)毒素試驗（BET）是用鱟變形細胞裂解物（LAL）測內(nèi)毒素的體外方法，LAL 測試獲國際藥典推薦。上?？贵w藥物內(nèi)毒素檢測方法驗證

繪制內(nèi)毒素標準曲線時，起始濃度需統(tǒng)一為 1000EU/mL，避免稀釋誤差。北京血液制品內(nèi)毒素檢測LER現(xiàn)象

在開展內(nèi)毒素檢測時，樣品的 pH 值與二價離子（Mg2?、Ca2?）水平是影響鱟試劑酶促反應的關(guān)鍵因素，直接關(guān)系檢測結(jié)果的準確性。鱟試劑檢測內(nèi)毒素依賴絲氨酸蛋白酶的級聯(lián)放大反應，該反應的合適 pH 值范圍為 6.0-8.0，若樣品過酸或過堿，會快速降低酶活性，甚至導致酶徹底失活，進而出現(xiàn)內(nèi)毒素檢測假陰性。針對這一問題，可使用 0.1N 或更低濃度的 HCl/NaOH 溶液，將樣品 pH 值準確調(diào)節(jié)至適宜區(qū)間，為反應提供穩(wěn)定環(huán)境。同時，二價離子是反應必需的輔助因子：Mg2?是內(nèi)毒素活化鱟試劑的關(guān)鍵，缺乏會直接阻斷反應啟動；Ca2?雖參與酶促反應，但濃度過高會反向抑制反應效率。若樣品中含有肝素鈉、EDTA、檸檬酸鈉等螯合劑，會與二價離子結(jié)合導致其濃度不足，此時可通過內(nèi)毒素檢查用水稀釋樣品降低螯合劑濃度，或添加特定二價離子試劑補充，但需嚴格控制離子濃度，避免過度增強反應引發(fā)誤差，確保內(nèi)毒素檢測能真實反映樣品中的內(nèi)毒素殘留量。
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