河南抗體藥物熱原檢測(cè)

革蘭氏陽(yáng)性菌注射劑產(chǎn)品只依賴內(nèi)毒素檢測(cè)存在安全風(fēng)險(xiǎn)，需結(jié)合熱原檢測(cè)特性制定防控方案。內(nèi)毒素是革蘭氏陰性菌細(xì)胞壁的脂多糖成分，而革蘭氏陽(yáng)性菌可產(chǎn)生非內(nèi)毒素?zé)嵩∟EPs），如脂磷壁酸，這類物質(zhì)同樣能引發(fā)人體發(fā)熱反應(yīng)，若只檢測(cè)內(nèi)毒素，可能遺漏 NEPs 污染，導(dǎo)致臨床用藥風(fēng)險(xiǎn)。對(duì)此，風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估需重點(diǎn)關(guān)注三點(diǎn)：一是建議開(kāi)展家兔法與內(nèi)毒素檢測(cè)的一致性實(shí)驗(yàn)，對(duì)比兩種方法的檢測(cè)結(jié)果，排查是否存在內(nèi)毒素未檢出但家兔法陽(yáng)性的情況；二是采用 MAT 法熱原檢測(cè)，其通過(guò)單核細(xì)胞活化機(jī)制，可同時(shí)識(shí)別內(nèi)毒素與 NEPs，若 MAT 法檢測(cè)陽(yáng)性，需進(jìn)一步追溯 NEPs 來(lái)源；三是若無(wú)法排除 NEPs 風(fēng)險(xiǎn)，必須按藥典要求補(bǔ)充熱原檢測(cè)（如 MAT 法或家兔法），而非只依賴內(nèi)毒素檢測(cè)。尤其對(duì)于新藥或工藝變更后的產(chǎn)品，需通過(guò)多方法驗(yàn)證，確保熱原檢測(cè)覆蓋所有潛在致熱物質(zhì)，保障臨床用藥安全。

中國(guó)藥典與歐洲藥典對(duì) MAT 熱原檢測(cè)的細(xì)胞類型及復(fù)孔數(shù)有明確要求，且存在細(xì)節(jié)差異。細(xì)胞類型上，兩者均認(rèn)可人全血、PBMC（外周血單個(gè)核細(xì)胞，至少 4 個(gè)供體，歐洲藥典建議 8 個(gè)供體），中國(guó)藥典明確將單核細(xì)胞系納入，歐洲藥典則要求單核細(xì)胞系需做支原體污染檢測(cè)、細(xì)胞鑒別等；檢測(cè)方法均為 “熱原刺激細(xì)胞 + ELISA 檢測(cè) IL-6/IL-1β/TNF-α”。復(fù)孔數(shù)方面，兩者均規(guī)定平行孔≥4、濃度點(diǎn)≥4，中國(guó)藥典額外要求標(biāo)曲 r≥0.90，主要目的是通過(guò)多重復(fù)孔抵消 PBMC 的不穩(wěn)定性，確保熱原檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確可靠。

單核細(xì)胞活化反應(yīng)測(cè)定（MAT）是近年來(lái)熱原檢測(cè)領(lǐng)域的突破性技術(shù)，其原理基于人體免疫系統(tǒng)對(duì)熱原的天然應(yīng)答機(jī)制：人源單核細(xì)胞（如 THP-1 細(xì)胞系或新鮮人全血單核細(xì)胞）在熱原刺激下，會(huì)活化胞內(nèi)炎癥信號(hào)通路，釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細(xì)胞因子，通過(guò) ELISA 檢測(cè)細(xì)胞因子的濃度，即可間接反映樣品中熱原的總量與活性。與傳統(tǒng)檢測(cè)方法相比，MAT 法具備三大不可替代的優(yōu)勢(shì)：一是廣譜性，可同時(shí)檢測(cè)細(xì)菌內(nèi)毒素、病毒、真菌毒素、支原體等所有類型熱原，填補(bǔ)了鱟試驗(yàn)法只能檢測(cè)內(nèi)毒素的 “非內(nèi)毒素?zé)嵩^(qū)”，尤其適用于疫苗、基因治療產(chǎn)品等易受多種熱原污染的高風(fēng)險(xiǎn)產(chǎn)品；二是人源相關(guān)性，采用與人體同源的細(xì)胞模型，檢測(cè)結(jié)果更貼近臨床實(shí)際熱原反應(yīng)，避免家兔試驗(yàn)中動(dòng)物種屬差異導(dǎo)致的誤判；三是高靈敏度，對(duì)細(xì)菌內(nèi)毒素的檢測(cè)限可達(dá) 0.0125EU/mL，對(duì)非內(nèi)毒素?zé)嵩ㄈ缃湍付嗵?、腺病毒）的檢測(cè)限低至 ng/pg 級(jí)，滿足低限值產(chǎn)品的質(zhì)控需求。

熱原檢測(cè)MAT法的法規(guī)地位持續(xù)提升，已成為多國(guó)藥典認(rèn)可的熱原檢測(cè)替代方法。歐洲藥典（EP）是推動(dòng) MAT 應(yīng)用的關(guān)鍵力量：通則 2.6.30 明確 MAT 可替代家兔熱原試驗(yàn)（RPT），且能同時(shí)檢測(cè)內(nèi)毒素與非內(nèi)毒素?zé)嵩?024 年歐洲藥典委員會(huì)批準(zhǔn)刪除所有條款中的家兔法，修訂文本將于 2025 年7月1日生效，強(qiáng)制鼓勵(lì)使用 MAT 等體外替代方法。美國(guó)藥典（USP）<151> 規(guī)定，經(jīng)驗(yàn)證的體外熱原試驗(yàn)（如 MAT）可替代家兔法，且需依據(jù) USP<1225>開(kāi)展驗(yàn)證；FDA 行業(yè)指南進(jìn)一步明確 MAT 的合規(guī)性。中國(guó)藥典 2020 年版通則 9301 將 MAT 列為熱原檢查的補(bǔ)充方法，雖暫未替代家兔法，但明確其適用于復(fù)雜基質(zhì)樣品的全熱原篩查。此外，ISO 10993-1、ICCVAM 等國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)也優(yōu)先推薦體外熱原檢測(cè)模型，全球法規(guī)協(xié)同推動(dòng) MAT 成為熱原檢測(cè)的主流技術(shù)。

MAT法熱原檢測(cè)出現(xiàn) “無(wú)信號(hào)”，需從試劑、實(shí)驗(yàn)操作、儀器三方面定位原因并解決。試劑層面，抗體不足或失活會(huì)導(dǎo)致無(wú)法捕獲 IL-6，需核對(duì)抗體稀釋比例，檢查保存條件（如 2-8℃）與有效期，必要時(shí)更換試劑；底物失效（如變色、沉淀）會(huì)無(wú)法顯色，需觀察底物外觀，失效則更換；混合不同試劑盒試劑會(huì)因成分不匹配導(dǎo)致反應(yīng)失敗，需使用同試劑盒試劑；ELISA 試劑盒保存不當(dāng)（如反復(fù)凍融）會(huì)破壞試劑活性，需按說(shuō)明書分條件保存（如抗體 2-8℃、底物避光）。實(shí)驗(yàn)操作中，孵育溫度過(guò)低（<37℃）會(huì)抑制酶促反應(yīng)，需提前將試劑與孔板平衡至室溫，確保孵育溫度達(dá)標(biāo)；洗板機(jī)壓力過(guò)高或手動(dòng)洗滌過(guò)猛，會(huì)洗去結(jié)合的抗體與酶，需調(diào)整洗板機(jī)壓力或輕柔手動(dòng)洗滌；孵育時(shí)孔板未密封導(dǎo)致孔變干，會(huì)使反應(yīng)體系破壞，需用封口膜密封孔板。儀器方面，洗板機(jī)噴頭堵塞會(huì)導(dǎo)致洗滌不均或未洗，需清理噴頭；酶標(biāo)儀波長(zhǎng)設(shè)置錯(cuò)誤（未選 450nm）會(huì)無(wú)法檢測(cè)信號(hào)，需確認(rèn)波長(zhǎng)設(shè)置正確。

熱原檢測(cè)技術(shù)自 20 世紀(jì)初問(wèn)世以來(lái)，經(jīng)歷了 “動(dòng)物試驗(yàn)→體外生化檢測(cè)→細(xì)胞生物學(xué)檢測(cè)” 的三次關(guān)鍵變革，每一次變革均推動(dòng)檢測(cè)效率、準(zhǔn)確性與全面性的提升。20 世紀(jì)初至中期，熱原檢測(cè)方法只有家兔熱原試驗(yàn)，通過(guò)觀察家兔體溫變化篩查熱原，雖實(shí)現(xiàn)了廣譜檢測(cè)，但存在動(dòng)物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限，難以滿足制藥行業(yè)快速發(fā)展需求。20 世紀(jì) 60 年代，鱟試驗(yàn)法（LAL 法）的發(fā)明開(kāi)啟了熱原檢測(cè)的 “體外生化時(shí)代”，利用鱟血變形細(xì)胞裂解物的凝血級(jí)聯(lián)反應(yīng)檢測(cè)細(xì)菌內(nèi)毒素，靈敏度提升至 ng 級(jí)，檢測(cè)時(shí)間縮短至 1-2 小時(shí)，迅速成為制藥行業(yè)常規(guī)質(zhì)控方法；但該方法依賴鱟資源，易受 β- 葡聚糖干擾，且只能檢測(cè)內(nèi)毒素，無(wú)法覆蓋非內(nèi)毒素?zé)嵩?1 世紀(jì)以來(lái)，重組技術(shù)與細(xì)胞生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展推動(dòng)熱原檢測(cè)進(jìn)入 “全熱原管控時(shí)代”：重組級(jí)聯(lián)試劑（rCR）與重組 C 因子試劑（rFC）通過(guò)基因工程技術(shù)制備，擺脫對(duì)鱟資源的依賴，消除葡聚糖干擾，實(shí)現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn)；單核細(xì)胞活化反應(yīng)測(cè)定（MAT）利用人源單核細(xì)胞檢測(cè)全類型熱原，填補(bǔ)非內(nèi)毒素?zé)嵩瓩z測(cè)空白，且結(jié)果更貼近人體實(shí)際反應(yīng)。