江蘇重組蛋白內(nèi)毒素檢測結(jié)果判定
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發(fā)布時間:2025-10-27
醫(yī)療器械(如輸液器、注射器、植入式設(shè)備)若攜帶內(nèi)毒素,可能通過血液、組織接觸引發(fā)異常反應(yīng)或炎癥反應(yīng)。其檢測需遵循 “模擬臨床使用” 原則:采用浸提液(如 0.9% 氯化鈉溶液或注射用水)在 37℃±1℃下浸提器械表面內(nèi)毒素,再通過 LAL 或 rFC 法檢測浸提液。不同器械的內(nèi)毒素限值差異明顯:一次性輸液器需≤0.5 EU/device,植入式心臟瓣膜則要求更嚴格(≤0.06 EU/device)。檢測時需注意器械材質(zhì)對浸提效率的影響,如塑料類器械可能吸附內(nèi)毒素,需優(yōu)化浸提時間(通常≥1 小時)或采用超聲輔助提取,確保殘留內(nèi)毒素被充分檢出。
動態(tài)顯色法鱟試劑監(jiān)測吸光度變化定量內(nèi)毒素,抗干擾強,適配復(fù)雜基質(zhì)樣品檢測。江蘇重組蛋白內(nèi)毒素檢測結(jié)果判定
在內(nèi)毒素檢測的技術(shù)體系中,凝膠法與動態(tài)顯色法基于不同原理與特性,形成互補應(yīng)用格局。凝膠法依托鱟試劑與內(nèi)毒素的凝集反應(yīng),實現(xiàn)定性或半定量檢測,其靈敏度覆蓋 0.03EU/ml、0.06EU/ml 等多梯度,60 分鐘即可完成反應(yīng);檢測結(jié)果依賴肉眼觀察(180° 倒轉(zhuǎn)判讀凝膠形成),數(shù)據(jù)需手工記錄,配套 內(nèi)毒素凝膠法測定儀(恒溫儀) 即可開展,雖自動化程度有限,但操作簡潔,適用于生產(chǎn)環(huán)節(jié)的快速初篩。與之相比,動態(tài)顯色法通過監(jiān)測反應(yīng)混合物吸光度或透光率的變化(如達預(yù)設(shè)檢測值的反應(yīng)時間、信號增速)實現(xiàn) 定量檢測 ,靈敏度拓展至 5-0.005EU/ml ,60-90 分鐘反應(yīng)時長雖略長,卻可借助酶標儀或全自動內(nèi)毒素檢測分析儀完成全流程自動化操作—軟件實時采集數(shù)據(jù),契合藥品生產(chǎn)質(zhì)量管理規(guī)范(GMP)對數(shù)據(jù)追溯與精度的要求。二者各有側(cè)重:凝膠法以 “快速定性” 服務(wù)基礎(chǔ)防控,動態(tài)顯色法憑 “準確定量 + 自動化” 支撐嚴苛質(zhì)控,共同為內(nèi)毒素檢測提供靈活適配的技術(shù)路徑。
北京合規(guī)性內(nèi)毒素檢測鱟試劑重組級聯(lián)試劑(rCR)推動內(nèi)毒素檢測向可持續(xù)發(fā)展轉(zhuǎn)型,兼顧生態(tài)保護與藥品安全質(zhì)控。
樣品中的高滲透性成分(如高濃度鹽、糖)會通過改變反應(yīng)體系滲透壓,抑制鱟試劑反應(yīng),影響內(nèi)毒素檢測結(jié)果。例如,濃度為 70% 的葡萄糖溶液、高濃度氯化鈉溶液等,會形成高滲透壓環(huán)境,導(dǎo)致鱟試劑中的蛋白質(zhì)脫水變性,喪失酶活性,進而使內(nèi)毒素無法被正常檢測,出現(xiàn)假陰性。這類高滲透性基質(zhì)的干擾機制明確 —— 通過破壞蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)影響酶促反應(yīng),且干擾程度與濃度正相關(guān)。為消除這類干擾,解決方案是使用內(nèi)毒素檢查用水稀釋樣品:根據(jù)樣品滲透性高低,逐步稀釋至適宜濃度(通常需稀釋至滲透壓與生理鹽水接近),降低對蛋白質(zhì)的脫水作用,恢復(fù)鱟試劑中酶的活性。稀釋過程中需注意,稀釋倍數(shù)需在方法驗證確定的 “無干擾稀釋范圍” 內(nèi),避免因過度稀釋導(dǎo)致內(nèi)毒素濃度低于檢測限,確保內(nèi)毒素檢測既能規(guī)避高滲透性抑制,又能準確捕捉微量內(nèi)毒素。
內(nèi)毒素檢測常與熱原檢測混淆,二者既有關(guān)聯(lián)又有區(qū)別:熱原是指所有能引起發(fā)熱的物質(zhì)(包括內(nèi)毒素、病毒、真菌等),通過傳統(tǒng)家兔熱原試驗檢測;內(nèi)毒素是熱原的主要成分(占 90% 以上),檢測更具特異性。目前,家兔熱原試驗因操作復(fù)雜、動物成本高,已逐漸被單核細胞活化反應(yīng)測定法(MAT)替代,但部分產(chǎn)品(如放射性質(zhì)藥物、血液制品)仍需保留家兔試驗作為補充。法規(guī)要求內(nèi)毒素檢測結(jié)果需與熱原風(fēng)險關(guān)聯(lián),若內(nèi)毒素檢測合格但臨床出現(xiàn)熱原反應(yīng),需排查是否存在非內(nèi)毒素類熱原,通過聯(lián)合檢測確保產(chǎn)品安全性。
細菌內(nèi)毒素檢查有凝膠法和光度測定法,結(jié)果有爭議時,除規(guī)定外以凝膠限度試驗為準。
實驗數(shù)據(jù)充分證明,內(nèi)毒素檢測重組級聯(lián)試劑(rCR)與天然鱟試劑的檢測結(jié)果具有高度等效性,可實現(xiàn)方法無縫切換。對細胞培養(yǎng)輔料、凍干甲型肝炎疫苗、單抗 A/B 等 8 類代表性樣品的平行檢測顯示,rCR 的檢測平均值為 0.001-0.026EU/mL,天然鱟試劑為 0.002-0.034EU/mL,兩者偏差≤0.003EU/mL。加標回收率方面,rCR 為 70%-175.4%,天然鱟試劑為 82.2%-156.6%,均處于 50%-200% 的合格范圍。批內(nèi)精密度上,rCR 的 CV 值為 0.524%-14.716%,天然鱟試劑為 0.908%-12.348%,均滿足法規(guī)對精密度的要求。這種等效性確保了實驗室在切換至重組試劑時,歷史數(shù)據(jù)和工藝控制標準的連續(xù)性,降低方法轉(zhuǎn)換風(fēng)險。
β- 葡聚糖刺激 G 因子致假陽性,用含抗增液的鱟試劑可優(yōu)化內(nèi)毒素檢測結(jié)果。江蘇重組蛋白內(nèi)毒素檢測結(jié)果判定
重組鱟試劑無動物源,支持 3R 原則,批次差異小,適配動態(tài)顯色法酶標儀。江蘇重組蛋白內(nèi)毒素檢測結(jié)果判定
內(nèi)毒素檢測的實驗方案需遵循“標曲可靠性驗證(靈敏度復(fù)核)-稀釋倍數(shù)計算-干擾試驗”的完整流程,以保障檢測結(jié)果準確合規(guī)。首先進行標曲可靠性試驗,用標準內(nèi)毒素制備至少3個濃度的稀釋液(相鄰濃度間稀釋倍數(shù)不超過10,下限濃度不低于鱟試劑標示檢測限),每濃度設(shè) 3 支平行管,同時做2支陰性對照;當陰性對照的吸光度小于或透光率大于標準曲線下限的檢測值或反應(yīng)時間大于標準曲線下限的反應(yīng)時間,對數(shù)據(jù)進行線性回歸,相關(guān)系數(shù)r的幅值≥0.980時試驗方有效,否則需重新操作。接著按公式 L=K/M 確定樣本內(nèi)毒素限值,K 值依給藥途徑而定,M結(jié)合人均60kg體重、1.62m2 體表面積及上限給藥劑量計算,也可參考藥典行標。隨后明確有效稀釋上限倍數(shù)(MVD),即供試品允許稀釋的上限倍數(shù),確保在此范圍內(nèi)檢測限值。再開展樣本干擾試驗,制備供試品溶液(A)、供試品加標溶液(B,加標濃度為標曲中點)、標準曲線溶液(C)及陰性對照(D),按公式 R=(Cs-Ct)/λm×100%計算加標回收率,50%-200%為合格;若鱟試劑、生產(chǎn)工藝等發(fā)生變化,需重新進行干擾試驗,保障內(nèi)毒素檢測的可靠性。
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